Avaliação in silico do perfil de expressão gênica do sindecam-4 nos diferentes subtipos de tumores de mama

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Carina Mucciolo Melo
Laura Romanholi de Oliveira Pereira
Ariane Carolina Ferreira
Mariane de Barros Ribeiro da Silva
Maria Aparecida da Silva Pinhal

Resumo

Introdução: O câncer de mama corresponde a uma das principais causas de morte em mulheres. Os tumores luminais A e B apresentam boa resposta com tratamentos hormonais, os tumores que superexpressam HER-2 podem ser tratados com anticorpos monoclonais, já os tumores triplo-negativos apresentam poucos tratamentos disponíveis por apresentarem expressão baixa ou ausente dos receptores hormonais e HER-2, além de pior progressão tumoral. Os sindecans são proteoglicanos de heparam sulfato que tem função de interagir com fatores de crescimento, citocinas e matriz extracelular, modulando assim processos importantes na progressão tumoral. Objetivo: Analisar a expressão o sindecam-4 nos diferentes subtipos de tumores de mama. Métodos: A bioinformática vem se mostrando útil para estudo de novos biomarcadores. No presente estudo, foi analisado o banco de dados TCGA (514 pacientes) e Metabric (1898 pacientes) utilizando o software cBioportal. Foram analisados os dados de expressão gênica por RNA-Seq e Microarray. Resultados: Foi verificada alteração de expressão gênica do sindecam-4 entre os diferentes subtipos de tumores de mama. Pacientes com tumor triplo-negativo tiveram a expressão diminuída para sindecam-4 em ambos os bancos de dados. Conclusão: Foi verificado que sindecam-4 parece ser um potencial biomarcador em tumores de mama, a expressão diminuída de sindecam-4 parece estar relacionada a um pior prognóstico.

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Como Citar
Melo, C. M., Pereira, L. R. de O., Ferreira, A. C., Silva, M. de B. R. da, & Pinhal, M. A. da S. (2024). Avaliação in silico do perfil de expressão gênica do sindecam-4 nos diferentes subtipos de tumores de mama. ABCS Health Sciences, 49, e024202. https://doi.org/10.7322/abcshs.2021293.2016
Seção
Artigos Originais

Referências

Brasil. Instituto Nacional de Câncer José Alencar Gomes da Silva (INCA). Atlas de mortalidade por câncer. Rio de Janeiro: Ministério da Saúde, 2021.

Amin MB, Greene FL, Edge SB, Compton CC, Gershenwald JE, Brookland RK, et al. The Eighth Edition AJCC Cancer Staging Manual: Continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA Cancer J Clin. 2017;67(2):93-9. https://doi.org/10.3322/caac.21388

Giuliano AE, Connolly JL, Edge SB, Mittendorf EA, Rugo HS, Solin LJ, et al. Breast Cancer-Major changes in the American Joint Committee on Cancer eighth edition cancer staging manual. CA Cancer J Clin. 2017;67(4):290-303. https://doi.org/10.3322/caac.21393

Hamam R, Hamam D, Alsaleh KA, Kassem M, Zaher W, Alfayez M, et al. Circulating microRNAs in breast cancer: novel diagnostic and prognostic biomarkers. Cell Death Dis. 2017;8(9):e3045. https://doi.org/10.1038/cddis.2017.440

von Minckwitz G, Procter M, Azambuja E, Zardavas D, Benyunes M, Viale G, et al. Adjuvant Pertuzumab and Trastuzumab in Early HER2-Positive Breast Cancer. N Engl J Med. 2017;377(2):122-31. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1703643

Onyeisi JOS, Lopes CC, Götte M. Syndecan-4 as a pathogenesis factor and therapeutic target in cancer. Biomolecules. 2021;11(4):503. https://doi.org/10.3390/biom11040503

Afratis NA, Nikitovic D, Multhaupt HAB, Theocharis AD, Couchman JR, Karamanos NK. Syndecans - key regulators of cell signaling and biological functions. FEBS J. 2017;284(1):27-41. https://doi.org/10.1111/febs.13940

Gondelaud F, Ricard-Blum S. Structures, and interactions of syndecans. FEBS J. 2019;286(15):2994-3007. https://doi.org/10.1111/febs.14828

Lendorf ME, Manon-Jensen T, Kronqvist P, Multhaupt HAB, Couchman JR. Syndecan-1 and syndecan-4 are independent indicators of breast carcinoma. J Histochem Cytochem. 2011;59(6):615-29. https://doi.org/10.1369/0022155411405057

Jechorek D, Haeusler-Pliske I, Meyer F, Roessner A. Diagnostic value of syndecan-4 protein expression in colorectal cancer. Pathol Res Pract. 2021; 222:153431. https://doi.org/10.1016/j.prp.2021.153431

Santos NJ, Barquilha CN, Barbosa IC, Macedo RT, Lima FO, Justulin LA, et al. Syndecan family gene and protein expression and their prognostic values for prostate cancer. Int J Mol Sci. 2021;22(16):8669. https://doi.org/10.3390/ijms22168669

Sanchez C, Lambert C, Dubuc JE, Bertrand B, Pap T, Henrotin Y. Syndecan-4 is increased in the osteoarthritic knee, but not hip or shoulder, articular hypertrophic chondrocytes. Cartilage. 2021;13(2 suppl):862S-71. https://doi.org/10.1177/1947603519870855

Herum KM, Romaine A, Wang A, Melleby AO, Strand ME, Pacheco J, et al. Syndecan-4 protects the heart from the profibrotic effects of thrombin-cleaved osteopontin. J Am Heart Assoc. 2020;9(3):e013518. https://doi.org/10.1161/JAHA.119.013518

Hallberg G, Andersson E, Naessén T, Ordeberg GE. The expression of syndecan-1, syndecan-4, and decorin in healthy human breast tissue during the menstrual cycle. Reprod Biol Endocrinol. 2010;8:35. https://doi.org/10.1186/1477-7827-8-35

Lambert J, Makin K, Akbareian S, Johnson R, Alghamdi AAA, Robinson SD, et al. ADAMTS-1 and syndecan-4 intersect in the regulation of cell migration and angiogenesis. J Cell Sci. 2020;133(7):jcs235762. https://doi.org/10.1242/jcs.235762

Oh ES, Woods A, Couchman JR. Syndecan-4 proteoglycan regulates the distribution and activity of protein kinase C. J Biol Chem. 1997;272(13):8133-6. https://doi.org/10.1074/jbc.272.13.8133

Gopal S, Bober A, Whiteford JR, Multhaupt HA, Yoneda A, Couchman JR. Heparan sulfate chain valency controls syndecan-4 function in cell adhesion. J Biol Chem. 2010;285(19):14247-58. https://doi.org/10.1074/jbc.M109.056945

Vuong TT, Reine TM, Sudworth A, Jenssen TG, Kolset SO. Syndecan-4 is a major syndecan in primary human endothelial cells in vitro, modulated by inflammatory stimuli and involved in wound healing. J Histochem Cytochem. 2015;63(4):280-92. https://doi.org/10.1369/0022155415568995

Elfenbein A, Simons M. Syndecan-4 signaling at a glance. J Cell Sci. 2013;126(Pt 17):3799-804. https://doi.org/10.1242/jcs.124636

Goicoechea SM, Zinn A, Awadia SS, Snyder K, Garcia-Mata R. A RhoG-mediated signaling pathway that modulates invadopodia dynamics in breast cancer cells. J Cell Sci. 2017;130(6):1064-77. https://doi.org/10.1242/jcs.195552

Yadav S, Barton M, Nguyen NT. Stretching induces overexpression of RhoA and Rac1 GTPases in breast cancer cells. Adv Biosyst. 2020;4(2):e1900222. https://doi.org/10.1002/adbi.201900222